細胞培養：

細胞培養是指體外模擬體內需要的生長條件（溫度，營養等），然后加上一些處理條件，比如做藥物篩選，就可以做抗性基因的表達的篩選，比如還可以測定某個基因敲低或是過表達的產物，這個當然要結合WB來看最后基因的表達產物是否升高哦，細胞培養的應用還有很多，歡迎大家在后臺留言。

細胞培養的基本原理：細胞傳代（生存空間和營養不足，長得太密，代謝廢物太多，要洗洗，同時也要分離出一部分細胞，要加入新的培養液）換液（生存空間和營養剩余，但是代謝廢物太多，要洗洗，要吃飯，才能長好，所以要洗和加入新鮮培養基）凍存（太多了，先存起來，液氮里面里就是低溫，保存能量，活得久）

復蘇（解凍，恢復吃飯的能力，恢復生長）

胞培養的基本步驟（一定要明白每個步驟的意義和目的）：

01細胞傳代（貼壁細胞）：

試劑：PBS（PBS緩沖液），胰酶，含血清的培養基；

流程：顯微鏡下看一看培養皿里的細胞多不多，太多（80%~90%）會導致代謝廢物很多，先吸掉廢液，再用PBS洗一洗，同時太多會導致細胞黏在一起，這時候就需要加點胰酶消除它們之間的粘性，是否消除完，在顯微鏡下看一看，看完加入適宜的含血清的培養基，中和一下胰酶，這叫吹打，除此之外，細胞太多了，把一部分細胞移出來，加入適量的培養基放入孵箱繼續培養，這叫傳代。

02細胞換液：

試劑：PBS，含血清的培養基；

流程：先吸掉代謝廢物（即細胞瓶中的培養液），再用PBS洗一洗，由于細胞長得不是很多，細胞之間沒有黏在一起，因此不需要加入胰酶來消除它們之間的粘性。由于細胞要吃飯，加入新鮮的含血清的培養基，最后放到孵箱里面進行培養。

03細胞凍存：

試劑：凍存液，PBS，胰酶，含血清的培養基；

流程：要凍存，先配置凍存液，凍存液包含了：DMSO：防止在低溫（零度以下至-196℃）保存細胞時，細胞內液會形成冰晶，滲透壓會發生改變，細胞結構會出現紊亂，會導致細胞出現損傷。凍存液制備時，一般需與血清一起配置：因為兩者互融時，會散發熱量，所以凍存液需提前制備。

因為細胞太多了，需要凍存，所以要先看一看，吸一吸，洗一洗，分一分，中和一下，吹打制成細胞懸液，離心，吸掉上清液，加入凍存液，輕輕吹吸均勻，每管等量1ml裝入凍存管，4℃20min,-20℃30min,-80℃過夜，最后放入液氮罐。

04細胞復蘇：

試劑：含血清的培養基；

流程：從液氮中取出凍存管，迅速（小于3min）置于37℃水浴鍋中，解凍時，邊晃動邊觀察，當看到只有一小塊冰存在時，即可從水浴鍋中取出，打開凍存管，迅速將細胞懸液吸到離心管中，輕輕混勻，1000r/min,離心五分鐘，吸掉上清液，沉淀中加入適量培養液，放入孵箱中，培養。還有就是：復蘇的細胞，需要在24小時后，換一次培養液